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　　出口水果怎么检验多菌灵残留量

　　1 主题内容与适用范围

　　本标准规定了出口水果中多菌灵残留量检验的抽样、制样和液相色谱测定方法。

　　本标准适用于出口柑桔中多菌灵残留量的检验。

　　2 抽样和制样

　　2.1 检验批

　　以不超过1 500件为一检验批。

　　同一检验批的商品应具有相同的特征,如包装、标记、产地、规格和等级等。

　　2.2 抽样数量

　　批量,件 最低抽样数,件

　　1～25 1

　　26～100 5

　　101～250 10

　　251～1 500 15

　　2.3 抽样方法

　　按2.2规定的抽样件数随机抽取,逐件开启。每件至少取500g作为原始样品,原始样品总量不得少于2kg。加封后,标明标记,及时送实验室。

　　2.4 试样制备

　　将所取原始样品缩分出1kg,取可食部分,经组织捣碎机捣碎,均分成两份,装入洁净容器内,作为试样。密封,并标明标记。

　　2.5 试样保存

　　将试样于-18℃以下冷冻保存。

　　注：在抽样和制样的操作过程中,必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。

　　3 测定方法

　　3.1 方法提要

　　试样用盐酸溶液加热回流,进行提取。提取液经过滤后调至碱性,再用二氯甲烷提取。

　　提取液经浓缩,C18预处理小柱净化,甲醇洗脱。洗脱液浓缩后用液相色谱仪-紫外检测器测定,外标法定量。

　　3.2 试剂和材料

　　所用试剂除注明外,均为分析纯,水为蒸馏水。

　　3.2.1 正己烷：优级纯。

　　3.2.2 二氯甲烷。

　　3.2.3 甲醇：色谱纯。

　　3.2.4 甲醇溶液：20%(V/V)水溶液。

　　3.2.5 盐酸溶液：2mol/L。

　　3.2.6 氢氧化钠溶液：10mol/L,2mol/L。

　　3.2.7 碳酸氢钠溶液：用水溶解5g碳酸氢钠并稀释至100mL。

　　3.2.8 多菌灵标准品：纯度≥96%。

　　3.2.9 多菌灵标准溶液：准确称取适量的多菌灵标准品,先用少量的盐酸溶液(3.2.5)微热溶解,再用该盐酸溶液定容,配成浓度为1.00mg/mL的标准储备溶液。根据需要再配成适当浓度的标准工作溶液。

　　3.3 仪器和设备

　　3.3.1 液相色谱仪并配有紫外检测器。

　　3.3.2 离心管：具塞,5mL,15mL,50mL。

　　3.3.3 离心机：转速6 000r/min。

　　3.3.4 快速混匀器。

　　3.3.5 高速组织捣碎机。

　　3.3.6 多功能微量化学样品处理仪(或相当的装置)。

　　3.3.7 微量注射器：25μL、100μL。

　　3.3.8 玻璃抽滤器。

　　3.3.9 砂芯漏斗：2号或3号。

　　3.3.10 C18预处理小柱：先用3mL甲醇,再用同体积水分别淋洗。

　　3.3.11 注射器：5mL。

　　3.4 测定步骤

　　3.4.1 提取、净化

　　称取试样约5g(精确到0.1g)于50mL离心管(3.3.2)内,加10mL盐酸溶液(3.2.5),装上回流冷凝管后,加热至沸腾,回流30min。移出,冷却至室温。将离心管内的样液用砂芯漏斗抽滤,再用10mL盐酸溶液(3.2.5)分数次洗涤残渣。合并滤液,在容量瓶中用盐酸溶液(3.2.5)定容至25mL。

　　准确吸取2.5mL上述滤液,同时吸取与样液中多菌灵浓度相近的标准工作溶液2.5mL,分别置于15mL离心管中,加4mL二氯甲烷,在快速混匀器上混匀2min,离心(4 000r/min)3min。用尖嘴吸管吸出下层二氯甲烷,弃去。在水相中加入适量氢氧化钠溶液(10mol/L),使试液接近碱性,然后小心滴加氢氧化钠溶液(2mol/L),使试液的pH为10～11。再滴加碳酸氢钠溶液,使试液的pH调至9.5～10。用3×4 mL二氯甲烷在快速混匀器中提取2min,离心(4 000r/min)3min,用尖嘴吸管将二氯甲烷转入另一离心管中。合并三次二氯甲烷提取液,浓缩至1mL。

　　将上述浓缩的提取液通过注射器转入C18预处理小柱(3.3.10)。用3mL 甲醇溶液(3.2.4)洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。继用3mL正己烷洗涤离心管并过C18预处理小柱,弃去流出液。用2×2.5mL甲醇(3.2.3)洗涤离心管并过C18预处理小柱,收集二次洗脱液并浓缩至1mL以下。用甲醇(3.2.3)定容至1mL,供液相色谱测定。

　　3.4.2 测定

　　3.4.2.1 色谱条件

　　a. 色谱柱：μBondapak C18,300mm×29mm(id);

　　b. 流动相：甲醇-水(4+6);

　　c. 流速：0.8mL/min;

　　d. 检测器：紫外检测器,测定波长286nm;

　　e. 色谱柱温度：室温。

　　3.4.2.2 色谱测定

　　根据样液中多菌灵含量情况,选定与样液峰高相近的标准工作溶液。标准工作溶液和样液中多菌灵响应值均在仪器检测线性范围内。对标准工作溶液和样液等体积参插进样测定。在上述色谱条件下,多菌灵保留时间约为7min。

　　3.4.3 空白试验

　　除不加试样外,按上述测定步骤进行。

　　3.5 结果计算和表述

　　用色谱数据处理机或按下式计算试样中多菌灵残留含量：

　　h·cs

　　X=───-

　　hs·c

　　式中：X—试样中多菌灵残留量,mg/kg;

　　h—样液中多菌灵的峰高,mm;

　　hs—标准工作溶液中多菌灵的峰高,mm;

　　cs—标准工作溶液中多菌灵的浓度,μg/mL;

　　c—最终样液所代表的试样浓度,g/mL。

　　注：计算结果需扣除空白值。

　　4 测定低限、回收率

　　4.1 测定低限

　　本方法的测定低限为0.7mg/kg。

　　4.2 回收率

　　回收率的实验数据：多菌灵添加浓度在0.7～12.0mg/kg范围内,回收率为90.9%～102.2%。